پروتئینهای RAB1 به جذب وزیکولهای سازنده غشاء به میتوکندری در طی اتوفاژی انتخابی میتوکندری کمک میکنند.
پروژه کنترل کیفیت درون سلولی در موسسه علوم پزشکی متروپولیتن توکیو مکانیسم مولکولی را شناسایی کرده است که به شروع تشکیل غشاهای اتوفاژیک در اطراف میتوکندری آسیب دیده کمک می کند.
توسط موسسه علوم پزشکی متروپولیتن توکیو
ویرایش شده توسط Sadie Harley، بررسی توسط Robert Egan
این مقاله با توجه به روند و سیاستهای ویرایشی Science X بررسی شده است. ویراستاران ضمن اطمینان از اعتبار محتوا، ویژگی های زیر را برجسته کرده اند:
پروژه کنترل کیفیت درون سلولی در موسسه علوم پزشکی متروپولیتن توکیو مکانیسم مولکولی را شناسایی کرده است که به شروع تشکیل غشاهای اتوفاژیک در اطراف میتوکندری آسیب دیده کمک می کند.
این مطالعه نشان میدهد که GTPaseهای کوچک RAB1A و RAB1B بهعنوان پیوندهای مولکولی بین OPTN، یک آداپتور اتوفاژی، و وزیکولهای ATG9A عمل میکنند که در تشکیل اولیه غشاهای اتوفاژیک در طول میتوفاژی (اتوفاژی انتخابی میتوکندری) نقش دارند. با استفاده از وزیکول های ATG9A برای میتوکندری های آسیب دیده، مسیر OPTN-RAB1 به ایجاد محلی که در آن غشای اتوفاژیک شروع به تشکیل می شود، کمک می کند.
میتوکندری ها اندامک های ضروری هستند که انرژی تولید می کنند و عملکردهای متعددی را که برای بقای سلول لازم است انجام می دهند. با این حال، میتوکندری آسیب دیده می تواند برای سلول ها مضر باشد و بنابراین باید به طور انتخابی حذف شود. سلول ها این کار را از طریق میتوفاژی انجام می دهند، شکلی از اتوفاژی انتخابی که میتوکندری های آسیب دیده را شناسایی و حذف می کند.
یکی از بهترین مسیرهای میتوفاژی که توسط کیناز PINK1 و E3 یوبیکوئیتین لیگاز پارکین کنترل می شود. هنگامی که میتوکندری آسیب می بیند، PINK1 و پارکین باعث تجمع یوبیکوئیتین در سطح میتوکندری می شوند.
این سیگنال یوبیکوئیتین توسط آداپتورهای اتوفاژی مانند OPTN (optineurin) شناسایی می شود که میتوکندری های آسیب دیده را به دستگاه اتوفاژی متصل می کند. با این حال، یک سوال مهم باقی مانده است: چگونه یک آداپتور اتوفاژی مانند OPTN تشکیل یک غشای اتوفاژیک در اطراف میتوکندری آسیب دیده را آغاز می کند؟
گروه تحقیقاتی قبلا دریافته بود که OPTN وزیکول های ATG9A را برای میتوکندری های آسیب دیده به کار می گیرد. تصور می شود که وزیکول های ATG9A دانه های غشایی را فراهم می کنند و به عنوان اجزای مهم در مراحل اولیه تشکیل اتوفاگوزوم عمل می کنند.
این یافته نشان میدهد که آداپتورهای اتوفاژی ممکن است نقشی فراتر از اتصال ساده میتوکندریهای آسیبدیده به دستگاه اتوفاژی داشته باشند. آنها همچنین ممکن است به طور فعال اجزای غشایی مورد نیاز برای شروع تشکیل غشای اتوفاژیک را به کار گیرند. مکانیسم مولکولی مسئول این استخدام، با این حال، نامشخص باقی مانده است.
در مطالعه حاضر، محققان بررسی کردند که چگونه OPTN وزیکول های ATG9A را در طول میتوفاژی با واسطه PINK1-Parkin به کار می گیرد. انسان ها تقریبا 60 RAB GTPase دارند که به عنوان سوئیچ های مولکولی عمل می کنند که قاچاق غشای داخل سلولی را تنظیم می کنند. محققان پروتئینهای RAB را از نظر تعامل با OPTN غربال کردند و RAB1A و RAB1B را به عنوان شرکای اتصال OPTN شناسایی کردند.
محققان سپس بررسی کردند که آیا RAB1 برای بهکارگیری وزیکولهای ATG9A در میتوکندریهای آسیبدیده مورد نیاز است یا خیر. هنگامی که RAB1A و RAB1B به طور همزمان با استفاده از تداخل RNA از بین رفتند، وزیکولهای ATG9A دیگر به طور موثر در سایتهای OPTN انتخاب نشدند. مطابق با این نقص، سرکوب RAB1 میتوفاژی با واسطه PINK1-Parkin را کاهش داد.
این نتایج نشان داد که RAB1 به سادگی با OPTN در طول میتوفاژی مرتبط نیست، بلکه نقش اساسی در اتصال OPTN به ماشینهای قاچاق غشایی مورد نیاز برای تشکیل غشای اتوفاژیک دارد.
OPTN شامل چندین حوزه عملکردی است که به آن اجازه می دهد با اجزای مختلف دستگاه میتوفاژی تعامل داشته باشد. دامنه UBAN زنجیره های یوبیکوئیتین را تشخیص می دهد، در حالی که سایر مناطق با پروتئین های مربوط به اتوفاژی تعامل دارند.
محققان با استفاده از یک سیستم آنالیز برهمکنش پروتئین-پروتئین درون سلولی، پیشبینی ساختاری با AlphaFold و آنالیزهای جهشی دریافتند که OPTN مستقیما از طریق دامنه زیپ لوسین (LZ) با RAB1 تعامل دارد.
محققان همچنین دریافتند که RAB1 از طریق پرنیلاسیون C ترمینال با وزیکول های ATG9A مرتبط است. این یک توضیح مولکولی برای اینکه چگونه RAB1 می تواند به عنوان پل بین OPTN روی میتوکندری آسیب دیده و وزیکول های ATG9A عمل کند، ارائه می دهد. در این مدل، OPTN میتوکندری های آسیب دیده یوبی کوئیتین را تشخیص می دهد و به طور همزمان RAB1 را متصل می کند.
RAB1 به نوبه خود با وزیکول های ATG9A مرتبط می شود و در نتیجه این وزیکول ها را به میتوکندری آسیب دیده نزدیک می کند. بنابراین، این مطالعه یک محور OPTN-RAB1-ATG9A را شناسایی می کند که میتوکندری های آسیب دیده را با اجزای غشایی مورد نیاز برای شروع اتوفاژی به هم متصل می کند.
این یافته ها تصویر کامل تری از نحوه شروع میتوفاژی ارائه می دهد. OPTN به جای اینکه فقط به عنوان یک پل مولکولی بین میتوکندری های یوبی کوئیتین شده و غشای اتوفاژیک عمل کند، می تواند با به کارگیری وزیکول های ATG9A از طریق RAB1، به ایجاد یک محل تشکیل غشاء محلی کمک کند.
این مکانیسم ممکن است به ویژه در مراحل اولیه میتوفاژی مهم باشد، زمانی که سلول باید ماشین آلات مورد نیاز برای تولید یک غشای اتوفاژیک را در محل صحیح جمع کند.
اتوفاژی برای حفظ هموستاز سلولی ضروری است و نقص در اتوفاژی و کنترل کیفیت میتوکندری با بیماری های انسانی مرتبط است. اختلال در میتوفاژی با بیماری های عصبی از جمله بیماری پارکینسون مرتبط است. PINK1 و پارکین، تنظیمکنندههای کلیدی میتوفاژی، محصولات ژنهایی هستند که باعث ایجاد اشکال خانوادگی بیماری پارکینسون میشوند.
مطالعه حاضر مکانیسم مولکولی را شناسایی میکند که توضیح میدهد چگونه یک آداپتور اتوفاژی میتواند یوبیکوئیتیناسیون میتوکندری را با قاچاق غشاء هماهنگ کند. با شناسایی RAB1A و RAB1B به عنوان پیوندهای مولکولی بین وزیکولهای OPTN و ATG9A، این مطالعه بینش جدیدی در مورد نحوه شروع غشای اتوفاژیک در سطح میتوکندری آسیبدیده ارائه میدهد.
درک بهتر مکانیسمهای اساسی کنترل کیفیت میتوکندری و اتوفاژی ممکن است در نهایت به درک عمیقتر بیماریهای مرتبط با نقص در این سیستمهای کنترل کیفیت سلولی کمک کند.
واکا کوجیما و همکاران، RAB1 میتوفاژی وابسته به OPTN را از طریق استخدام ATG9A، اتوفاژی (2026) واسطه میکند. DOI: 10.1080/15548627.2026.2728346
ارائه شده توسط موسسه علوم پزشکی متروپولیتن توکیو
کارشناسی علوم زیستی و اکولوژی. پیشینه آزمایشگاه میکروبیولوژی با تجربه اخبار دارویی در صنایع نفت، گاز و تجدیدپذیر. نمایه کامل →
لیسانس زیست شناسی ریاضی، کارشناسی ارشد در نوشتن خلاق. خوش سفر با دیدگاه های منحصر به فرد در علم و زبان. نمایه کامل →
متن اصلی (انگلیسی)
RAB1 proteins help recruit membrane-building vesicles to mitochondria during mitochondria-selective autophagy
The Intracellular Quality Control Project at the Tokyo Metropolitan Institute of Medical Science has identified a molecular mechanism that helps initiate the formation of autophagic membranes around damaged mitochondria.